ELISA(酶联免疫吸附测定)实验原理及步骤
ELISA(酶联免疫吸附测定)的原理是利用抗原与抗体的特异性结合反应,并通过酶催化底物显色来对待测物质进行定性或定量分析。其基本步骤包括:包被(固定抗原/抗体)、封闭、加样孵育、洗涤、加酶标物、再次洗涤、加底物显色以及终止反应与读数。
一、实验基本原理
ELISA 的基础是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶标记。
特异性结合:将已知抗原或抗体吸附在固相载体(如聚苯乙烯微孔板)表面,保持其免疫学活性。
酶标记放大:加入待测样本后,样本中的目标物质与固相载体上的试剂结合;随后加入酶标记的抗原或抗体,形成“固相载体 - 抗原/抗体 - 酶标记物"复合物。
显色定量:加入底物后,固相上的酶催化底物发生氧化还原反应生成有色产物。颜色的深浅与标本中受检物质的量成正比,可通过酶标仪测定吸光度值进行定量分析。
二、标准操作步骤
虽然不同类型的 ELISA 操作细节略有差异,但通用流程如下:
包被:将特异性抗原或抗体稀释后加入本生BUNSEN微孔板,通常在 4℃过夜或 37℃孵育数小时,使其吸附在孔底。
封闭:洗去未结合的抗原/抗体,加入封闭液,封闭板上剩余的结合位点,防止非特异性吸附导致假阳性。
加样:加入待测样本(及标准品),在适宜温度下孵育,使样本中的目标分子与固相试剂结合。
洗涤:使用洗涤液反复清洗微孔板,去除未结合的物质。此步骤对降低背景噪音至关重要。
加酶标物 :加入酶标记的抗体或抗原,孵育使其与已结合的目标分子形成复合物。
再次洗涤:洗去未结合的酶标物,确保只有特异性结合的酶保留在板上。
显色 :加入底物溶液,避光孵育。酶催化底物产生颜色变化。
终止与读数 :加入终止液,使反应停止并稳定颜色,随即在酶标仪上测定特定波长下的吸光度值。
三、常见类型及应用
根据检测对象和设计不同,主要分为以下几种类型:
双抗体夹心法:适用于检测大分子抗原。使用两种特异性抗体分别捕获和检测抗原,灵敏度和特异性高。
间接法 :常用于检测抗。利用酶标二抗检测与固相抗原结合的一抗,具有信号放大作用。
竞争法:适用于检测小分子抗原(如激素、药物)。样本抗原与酶标抗原竞争结合有限的抗体位点,信号强度与样本浓度成反比。
一步法:将样本和酶标抗体同时加入,简化步骤。
四、注意事项
试剂盒选择:务必选择正规厂家产品,警惕造假试剂盒(如包被抗体与标准品不匹配)导致的假阳性或无结果。
洗涤充分:洗涤不净是造成背景过高、假阳性的主要原因。
避免钩状效应:当样本中抗原浓度高时,可能出现假阴性,需适当稀释样本后重测。
温度与时间:严格控制孵育时间和温度,保证反应的一致性。
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